Análise da atividade enzimática de MMP-2 e 9 coletadas por swab em úlcera venosa de membro inferior
Análise da atividade enzimática de MMP-2 e 9 coletadas por swab em úlcera venosa de membro inferior
Autores:
ARTIGO ORIGINAL
Jornal Vascular Brasileiro
versão impressa ISSN 1677-5449versão On-line ISSN 1677-7301
J. vasc. bras. vol.13 no.3 Porto Alegre jul./set. 2014
http://dx.doi.org/10.1590/jvb.2014.038
INTRODUÇÃO
As úlceras cutâneas venosas (UVs), decorrentes de insuficiência venosa crônica, possuem característica recidivante e processo de cicatrização lento, podendo causar edema, dor, desconforto, diminuição da mobilidade e impactar a qualidade de vida1,2. As UVs representam 70 a 80% das úlceras de membros inferiores e seu tratamento acarreta altos custos com serviços de saúde3,4. O tratamento destas úlceras, visando a cicatrização completa, bem como a determinação do prognóstico de cicatrização, são difíceis.
Dentre os reguladores fisiológicos do processo de reparo tecidual, estão as metaloproteinases (MMPs)5. As MMPs constituem uma família de enzimas zinco-dependentes que degradam várias moléculas da matriz extracelular (MEC). O balanço entre a produção de proteínas da MEC e a ação das MMPs é o principal determinante do remodelamento tecidual na homeostasia e na resposta a uma lesão6. Entretanto, quando a expressão de MMPs e sua cinética de atividade estão descontroladas, devido a altas taxas de síntese ou à falta de mecanismos regulatórios/inibitórios, seus efeitos podem ser deletérios. Tal desregulação pode contribuir para a destruição e a perda das propriedades mecânicas normais do tecido conjuntivo e para a cronicidade da ferida7,8.
Estudos verificaram um aumento global da atividade e da expressão de MMPs em UVs7,9. Nesse contexto, as MMPs 2 e 9, também conhecidas como gelatinases, têm recebido atenção especial. A expressão tecidual específica de MMP-9 é indicada como marcador prognóstico da cicatrização de úlceras crônicas10. Em estudo prévio, foram demonstrados altos níveis das MMPs 2 e 9 em UVs crônicas de membros inferiores9, sugerindo um papel crítico destas duas isoformas de MMPs na cicatrização de úlceras venosas. Desse modo, a expressão e a atividade dessas enzimas podem servir como marcadores para avaliar a efetividade e o mecanismo de ação de intervenções terapêuticas que visem acelerar o processo de cicatrização de úlceras crônicas.
A avaliação da atividade das MMPs 2 e 9 pode ser feita por zimografia, um método prático, reprodutível e de baixo custo. Contudo, o método de coleta de material biológico para análise de MMPs nos estudos envolve biópsia tecidual, o que dificulta a análise serial e causa desconforto e risco para o paciente, além de não ser tecnicamente prática para todos os profissionais de saúde. Outras técnicas, como a aspiração do exsudato, requerem uso de curativos específicos e demandam tempo11.
O objetivo do presente estudo foi determinar a viabilidade da avaliação da atividade enzimática das MMPs 2 e 9 através de um protocolo modificado de zimografia, a partir de amostras extraídas do exsudato de UV de membro inferior utilizando swab. Idealizamos um método simples, rápido, minimamente invasivo e de baixo custo, para extração serial (em diferentes fases da cicatrização) desse tipo de material biológico e análise da atividade de MMPs.
MÉTODO
Sujeitos
Foram estudadas amostras de seis pacientes com UV crônica de membro inferior, usuários do serviço ambulatorial do hospital universitário local. Os procedimentos foram aprovados pelo Comitê de Ética em Pesquisa (Protocolo 376/09). Os resultados são dados preliminares do ensaio clínico registrado com número RBR-44xmsx. Os pacientes apresentavam UV por pelo menos oito semanas, sem sinais clínicos de infecção ou doença arterial obstrutiva periférica, determinada pela aferição do índice tornozelo-braquial.
Coleta e processamento da amostra
Amostras de fluido proveniente da UV foram obtidas através de bastão com algodão estéril na ponta (swab), com movimentos de rolamento, lentos, de borda a borda, após pouca irrigação com solução salina estéril. O procedimento ocorreu durante a troca de curativo primário. Em seguida, as pontas dos swabs contendo as amostras coletadas foram colocadas em microtubos de 2 mL, rapidamente congeladas em nitrogênio líquido e armazenadas a –80 °C até o processamento de extração proteica, após duas a três semanas.
Para homogeneização, foram adicionados 250 μL de tampão de homogeneização aos swabs nos microtubos, composto de 50 mM Tris-HCl (pH 7,4); 3,1 mM Sacarose; 0,1% Triton X-100, à temperatura de 4 °C, sem agente redutor. As amostras foram misturadas em vórtex cinco vezes por 3 s, com repouso de 15 s entre as misturas. Posteriormente, os swabs foram invertidos nos microtubos e centrifugados (dois minutos, 10.000 rpm, 4 °C). Durante todo o procedimento, as amostras foram mantidas em gelo. A Figura 1 sumariza as etapas descritas.
Figura 1 Fluxograma dos procedimentos de coleta e processamento das amostras. Estão representadas desde as etapas de obtenção do exsudato venoso com swab até a aquisição da amostra final, contendo MMPs, para as análises subsequentes.
A concentração proteica foi determinada pelo Método de Bradford e quantificada utilizando-se controles padrões feitos a partir de albumina bovina em leitor de ELISA. A leitura foi feita em 595 nm, dez minutos após o ensaio, contra um branco de referência.
Atividade enzimática de MMPs por zimografia
As amostras foram separadas em géis de poliacrilamida na concentração de 8% de Acrilamida/Bisacrilamida 29:1 (Bio-Rad®), 0,1% SDS, pH 8,8 e contendo 1 mg/mL de gelatina (de pele suína, tipo A, G2500 - Sigma-Aldrich®). O gel de empacotamento foi de concentração de 4%, pH 6,8 e 0,1% SDS. As proteínas foram separadas sob voltagem constante de 100 V em tampão da seguinte concentração: 192 mM Glicina; 25 mM Tris; 0,1% SDS.
Após eletroforese, os géis foram imersos e agitados em solução de Triton (2,5% Triton X-100; 50 mM Tris, pH 7,4; 5 mM CaCl2) para remoção do SDS (três trocas em 60 minutos).
Em seguida, os géis foram imersos em solução de incubação, composta por 50 mM Tris (pH 7,4); 5 mM CaCl2; 150 mM NaCl, para ativação das MMPs a uma temperatura de 37 °C por 19 horas. Após a incubação, foi realizada a coloração com Coomassie Brilliant Blue G-250 (0,5% Comassie blue em 30% metanol e 10% ácido acético). Os géis foram submersos no corante por 30 minutos, em agitação. Logo em seguida, os géis foram descorados (35% Metanol; 10% ácido acético) durante 30 minutos e depois colocados em água deionizada.
Para análise densitométrica, os géis foram digitalizados em scanner de mesa. A atividade enzimática das MMPs foi determinada pela intensidade das bandas claras contra o fundo corado e identificada de acordo com os pesos moleculares, conforme descrito previamente9,12, com o programa ImageJ 1.46 (NIH, http://imagej.nih.gov/ij/). Nesse programa, a imagem inicialmente foi transformada em 8-bits. Depois, uma área retangular foi selecionada, envolvendo as bandas (áreas de digestão enzimática) e parte do fundo corado do gel. O contraste entre esses dois elementos pôde, então, ser demonstrado graficamente, indicando o nível de degradação da gelatina contida no gel13.
RESULTADOS
Inicialmente, constatamos a obtenção de quantidade proteica adequada de fluido de UV colhida através de swab, por meio do método de Bradford, em placa de ELISA (Tabela 1).
Tabela 1 Concentração proteica das amostras.
| Paciente | [proteína] (μg/μL) |
|---|---|
| 1 | 0,452 |
| 2 | 0,376 |
| 3 | 0,468 |
| 4 | 0,425 |
| 5 | 0,211 |
| 6 | 0,329 |
Testamos e definimos a concentração ideal de 8% para o gel de poliacrilamida, bem como um tempo de incubação para ativação enzimática de 19 horas e quantidades ideais de proteína total carregadas por poço nos géis entre 0,125 μg e 0,50 μg, para melhor visualização e quantificação das bandas.
A Figura 2 ilustra os resultados da zimografia. Descrições anteriores9,12 e cálculo da massa molecular permitiram identificar bandas referentes às formas de pró-MMP-9 e MMP-9, e pró-MMP-2 e MMP-2. Também se pode observar atividade gelatinolítica entre 100 kDa e 150 kDa (~130 kDa), descrito na literatura como um complexo de MMP, provavelmente contendo MMP-99,12. As bandas correspondentes às formas latente e ativa de cada enzima foram selecionadas conjuntamente (modelo da Figura 2D) e quantificadas por densitometria (Figura 3) para ilustração.
Figura 2 Géis de zimografia das seis amostras colhidas com swab. À esquerda, são mostrados os pesos moleculares dos marcadores; à direita estão indicadas as isoformas das metaloproteinases (MMPs) evidenciadas nos géis. Em D, é mostrado como o conjunto de bandas em cada poço foi selecionado para densitometria com o programa ImageJ. Complexo de MMP (130 kDa); pro-MMP-9 (92k Da); MMP-9 (84 kDa); pro-MMP-2 (72 kDa); MMP-2 (62 kDa). Poço 1: Marcadores, poços 2, 3 e 4: 0,5 μg, 0,25 μg e 0,125 μg, respectivamente.
Figura 3 Quantificações das metaloproteinases (MMPs) em um dos géis analisados. A: curvas densitométricas (picos invertidos) das bandas em cada poço do gel. A área dos picos representa a atividade gelatinolítica. Notar a área destacada da atividade da MMP-2 no poço 2. B: medida da área dos picos em unidades arbitrárias visando à análise comparativa
DISCUSSÃO
O presente estudo descreve um método viável e reprodutível para a extração de MMPs do exsudato de UVs através de swab e para análise da atividade enzimática por zimografia. Até onde sabemos, esta é a primeira descrição desta forma minimamente invasiva de extração de MMPs, além da demonstração da viabilidade da análise bioquímica a partir deste pequeno volume de amostra.
Durante a insuficiência venosa crônica, tem sido descrita a ocorrência de ativação anormal de MMPs e um desequilíbrio entre as isoformas, o que consequentemente contribui para a formação e a manutenção da UV7-9,14. Dentre as MMPs, a MMP-9 parece ser um marcador prognóstico da cicatrização de úlceras crônicas10. Além disso, a evolução do processo cicatricial de feridas crônicas está associada à diminuição da expressão de algumas MMPs14. A partir disso, o desenvolvimento de uma técnica simples de coleta de material biológico para análise das MMPs possibilita uma avaliação serial do processo cicatricial da úlcera e um uso mais difundido para a pesquisa clínica.
O presente estudo demonstrou que a coleta de exsudato de UV por swabé um método viável e reprodutível para a avaliação da atividade enzimática de MMPs-2 e MMP-9 por zimografia. A zimografia é uma técnica relativamente simples, eficaz e sensível na identificação de MMPs pela degradação de seu substrato preferencial e pelo seu peso molecular, permitindo resultados quantitativos12.
Por se basear em procedimento minimamente invasivo, estéril, rápido e de fácil manipulação, a técnica descrita no presente estudo consiste em uma alternativa aos métodos invasivos que envolvem biópsia e avaliação histopatológica utilizados em estudos anteriores9,15. Embora a biópsia possa fornecer informação topográfica, por exemplo, quando se compara o tecido das margens da ferida e o leito ulceroso, esta técnica requer anestesia local e causa desconforto ao paciente, o que dificulta a análise serial da ferida. O uso do exsudato através de aspiração, quando possível, ou pela coleta com swab, como apresentado neste estudo, reflete mais especificamente a atividade de MMPs do leito ulceroso. Embora os resultados destes dois métodos de coleta não tenham sido comparados em úlceras venosas, ambos apresentam concordância no caso de úlceras diabéticas16. Estudos futuros em úlceras venosas podem ser desenhados para avaliar a concordância entre o método baseado no swab e outros métodos, como a biópsia.
A técnica descrita no presente estudo também tem a vantagem de permitir a coleta por diversos profissionais da saúde, uma vez que não necessita de anestesia local, incisões ou perfurações, facilitando assim a análise da efetividade biológica de diversas intervenções terapêuticas.
CONCLUSÃO
A coleta através do swab mostrou-se um método minimamente invasivo, estéril, rápido, de fácil manuseio e eficaz para a coleta de fluido de UV, com o objetivo de extrair quantidade adequada de proteína total do exsudato de UV para análise da atividade enzimática de MMPs 2 e 9, através do protocolo de zimografia proposto no presente estudo.
