versão impressa ISSN 0101-2800versão On-line ISSN 2175-8239
J. Bras. Nefrol. vol.41 no.3 São Paulo jul./set. 2019 Epub 24-Jan-2019
http://dx.doi.org/10.1590/2175-8239-jbn-2018-0184
A nefropatia diabética (ND) é a causa mais comum de doença renal crônica e figura como uma das complicações de longo prazo mais importantes da diabetes. Embora a ND seja convencionalmente vista como uma doença não imune, inúmeras evidências demonstram que o mecanismo inflamatório pode desempenhar um papel fundamental em seu desenvolvimento e progressão.1-3
Vários fatores estão envolvidos no desenvolvimento e progressão da ND, incluindo fatores genéticos, estresse oxidativo4 hiperfiltração glomerular,5 acúmulo de produtos de glicação avançada (AGEs)6 e superexpressão do fator de crescimento transformante β (TGF-β), seguido de aumento das matrizes extracelulares.7
A membrana basal glomerular (MBG) é composta principalmente de laminina, colágeno tipo IV e proteoglicanos de heparan sulfato (HSPG). A degradação desses componentes resulta na ruptura da estrutura da membrana basal. Os proteoglicanos de heparan sulfato (HSPG) são abundantes nas matrizes extracelulares (MECs) e nas membranas basais, e são compostos por diversos polipeptídeos nucleares e HS.8,9
O HS mantém a integridade mecânica das membranas basais glomerulares. A digestão direta através da heparitinase existente nas membranas basais glomerulares resulta em perda de função da membrana.10 Relatos indicam perda de HSPG nas matrizes extracelulares glomerulares de pacientes com ND.11 Elevações dos níveis urinários e plasmáticos de heparanase foram relatados em diabetes tipo 2. Na ND, a elevação da heparanase urinária e de sua atividade como endoglicosidase que cliva especificamente a HS nas cadeias laterais da HSPG foram observadas em pacientes com diabetes tipo 1 e 2 com proteinúria.12,13 Portanto, a perda de HS na membrana basal glomerular resulta em diminuição da barreira de carga aniônica, o que a torna, possivelmente, uma das principais causas de albuminúria na ND.14,15
As células inflamatórias, e principalmente os macrófagos, estão presentes nos glomérulos e no interstício de pacientes com ND, sugerindo que o processo inflamatório também esteja imbricado no desenvolvimento da ND.16,17 Atividade da heparanase foi relatada em macrófagos, plaquetas, neutrófilos, monócitos, células de Langerhans e várias outras células.18-23 Supõe-se que a heparanase secretada ou associada à membrana seja responsável pela degradação da MEC. O fator de inibição da migração de macrófagos (MIF) é a primeira molécula a chegar ao local da inflamação, provavelmente determinando também o grau de inflamação celular.24 O MIF foi correlacionado com ambos os tipos de diabetes,25 e evidências indicam ligações entre MIF e ND. Além disso, o MIF também encontra-se elevado em ND experimental26 antes do início da microalbuminúria.27 Acredita-se que o aumento da expressão do MIF possa contribuir para a patogênese da ND. O presente estudo investigou os efeitos renais da inibição do MIF em um modelo diabético experimental.
Dezoito ratos machos Wistar com 10 semanas de idade, pesando 230 ± 20 g, foram recrutados junto ao biotério da Urmia University of Medical Sciences, Urmia, Irã. Todos os procedimentos realizados com os animais foram conduzidos de acordo com os Princípios para Cuidados com Animais de Laboratório (publicação nº 85-23 do NIH, revisada em 1985) e aprovados pelo Comitê de Ética da Urmia University of Medical Sciences. Os animais foram mantidos em condições controladas de temperatura (21 ± 2ºC) e ciclo de luz/escuridão de 12/12 h. Eles foram alimentados com ração padrão e água. Os ratos foram divididos aleatoriamente em três grupos (seis animais cada): Grupo 1 - controle saudável (injeção IP de 0,2 mL de soro fisiológico); Grupo 2 - diabético; e Grupo 3 - diabético tratado com antagonista do MIF (p425, 1 mg/kg IP diariamente).
Nos animais do grupo diabético, a patologia foi induzida por meio de uma única injeção intraperitoneal de estreptozotocina (STZ 50 mg/kg de peso corporal dissolvida em soro fisiológico). Os ratos no grupo de controle receberam injeção de soro fisiológico. Cinco dias após a injeção de STZ, os níveis de glicemia de jejum foram determinados com um glicosímetro. Ratos com glicemia acima de 200 mg/dL foram definidos como diabéticos. O inibidor do MIF (p424) foi dissolvido em soro fisiológico. O tratamento foi iniciado 21 dias após a injeção de STZ, sendo assim considerado como primeiro dia de tratamento. O tratamento prosseguiu diariamente por três semanas.
A partir da terceira semana após a indução diabética, os ratos foram mantidos individualmente em gaiolas metabólicas (8h-14h) e amostras de urina foram colhidas para dosagem de 6 h de excreção urinária de proteína e creatinina urinária. Os resultados revelaram um aumento significativo na albuminúria dos ratos diabéticos em comparação aos controles, o que os caracterizou como portadores de nefropatia.
Ao final da sexta semana, os ratos foram mantidos individualmente em gaiolas metabólicas (8h-14h) e amostras de urina de 6h foram colhidas para análise bioquímica. Posteriormente, seis ratos de cada grupo foram sacrificados sob anestesia com éter. Amostras de sangue e tecidos foram colhidas.
Amostras de sangue foram colhidas por punção cardíaca para dosagem de Na, K, BUN e creatinina (Cr). BUN sérico e creatinina foram medidos usando analisador automático e as concentrações séricas de Na e K foram medidas por fotometria de chama. Amostras de urina de 6 h também foram colhidas para a dosagem de BUN, Cr, excreção urinária de proteína e glicosaminoglicanos urinários (GAGs).
A excreção urinária de proteína foi determinada por kit de teste (Pars Azmon, Irã) e medida por reação quantitativa com verde de bromocresol28 utilizando albumina de soro bovino como padrão. Alíquotas de 10 µL da amostra e padrão foram misturados separadamente em 1 mL de verde de bromocresol e, em seguida, a absorvância foi lida a 625 nm.
Os glicosaminoglicanos urinários foram medidos por espectrofotometria com comprimento de onda de 520 nm nas amostras de urina de 6h, pelo método colorimétrico descrito por Jong29 com 1,9 azul de dimetileno e heparan sulfato de rim bovino como padrão (Sigma Cat No H7640).
Após a coleta da amostra de sangue, o rim direito foi excisado e armazenado em formaldeído a 10%. Cortes de rim (5 µm) foram corados com ácido periódico de Schiff (PAS) e tricrômico de Masson para análise histológica e morfométrica. O acúmulo de matriz mesangial foi caracterizado por coloração PAS-positiva em áreas do anucleadas do mesângio. A matriz mesangial foi avaliada em 30 glomérulos selecionados aleatoriamente e caracterizados numericamente de maneira cega em uma escala de 0 a 4, onde 0 = 0-5%, 1 = 0,5-25%, 2 = 0,25-50%, 3 = 0,50-75 % e 4 = 0,75% de deposição. Os escores revelaram variações na extensão, mas não na intensidade da coloração.30 O "índice esclerótico" faz referência ao escore médio. A deposição de colágeno foi medida pelo método tricrômico de Masson realizado em 30 glomérulos, avaliada de maneira cega usando o sistema citado acima e relatada como unidade arbitrária.30,31 Os dados foram então relatados como índice esclerótico médio e escore de colocação do colágeno glomerular para cada grupo.
Os dados foram relatados como a média ± DP. A significância estatística das diferenças foi avaliada por ANOVA fator único no SPSS (versão 18; SPSS Inc., Chicago, EUA) seguida pelo teste de Tukey. Valores de p inferiores a 0,05 foram considerados estatisticamente significativos. Análises de regressão linear foram aplicadas para avaliar a relação entre as duas variáveis.
Como exibido na Tabela 1, foram observados aumentos significativos nos níveis séricos de BUN, Cr e K dos ratos com ND em relação aos controles (p < 0,001; p < 0,001; e p < 0,05, respectivamente). Contudo, não houve diferença significativa na concentração sérica de Na entre os grupos. A administração do antagonista do MIF (p425) no grupo com ND reduziram de forma significativa o BUN sérico e a Cr (p < 0,01 e p < 0,05, respectivamente). Coletivamente, os dados sugeriram que o p425 produziu efeito protetor contra as lesões causadas pela ND.
Tabela 1 Níveis séricos de creatinina, BUN, sódio e potássio nos grupos do estudo
Grupo | Creatinina (mg/dl) | BUN (mg/dl) | Na (meq/L) | K (meq/L) |
---|---|---|---|---|
Controle | 0.45 ± 0,1 | 13,3 ± 2,3 | 139,5 ± 4,8 | 4,2 ± 0,4 |
ND | 1,04 ± 0,2* | 26,1 ± 4* | 141,2 ± 3,2 | 5,3 ± 0,6* |
ND +p425 | 0,61 ± 0,1† | 18,2 ± 1,9† | 139 ± 4,7 | 4,6 ± 0,5 |
Valores exibidos como média ± DP. DN (nefropatia diabética), p425 (antagonista do MIF) * e † indicam diferença significativa em relação aos grupos de controle e ND, respectivamente (p < 0,05).
A Figura 1 mostra que no 5o, 21o e 42o dias do estudo de seis semanas os níveis de glicemia do grupo de controle foram 84,4 ± 8,9, 81,2 ± 5,1 e 87,7 ± 8,7 mg/dL, respectivamente. Os animais com ND apresentaram níveis significativamente elevados (316,4 ± 72,1, 328,1 ± 42,3 e 321,6 ± 74,3 mg/dL, respectivamente; p < 0,001). A elevação da glicemia permaneceu estável ao longo do tempo. A administração de p425 no grupo com ND no período do estudo de 42 dias reduziu a glicemia em comparação com o grupo com ND que não recebeu p425, embora a alteração não tenha sido estatisticamente significativa (Figura 1).
Ao final do período de seis semanas do estudo, os níveis de GAGs urinários de 6 horas foram significativamente mais elevados nos ratos com ND em comparação aos controles saudáveis (p < 0,001). Contudo, o grupo que recebeu antagonista do MIF (p425) apresentou excreção significativamente menor de GAGs do que os ratos com ND não tratados (p < 0,001, Tabela 2).
Tabela 2 Níveis urinários de creatinina, proteína e glicosaminoglicanos (GAG)
Grupo | Cr U (mg/dl) | Prot. U 21 (mg/6h) | Prot. U 42 (mg/6h) | GAG (mg/6h) |
---|---|---|---|---|
Controle | 33,9 ± 4,8 | 8,8 ± 2,4 | 9,4 ± 2,6 | 41,6 ± 6,8 |
ND | 26,9 ± 7,2 | 50 ± 14,6* | 70 ± 2,4* | 131,2 ± 19,2* |
ND +p425 | 29,4 ± 7,7 | 48,6 ± 18,3* | 17,4 ± 8,4† | 60,8 ± 12† |
Valores exibidos como média ± DP. DN (nefropatia diabética), p425 (antagonista do MIF) Prot. U 21 e 42 (proteína urinária no 21o e 42o dia). * e † indicam diferença significativa em relação aos grupos de controle e ND, respectivamente (p < 0,01).
Ao final do período de três semanas do estudo, o nível de excreção urinária de proteína de 6 horas foi de 8,8 ± 2,4, 50 ± 14,6 e 48,6 ± 18 mg/6h entre os controles saudáveis, controles diabéticos e controles diabéticos tratados, respectivamente. A excreção urinária de proteína aumentou significativamente nos ratos diabéticos (p < 0,01). O nível de excreção urinária de proteína de 6 horas permaneceu elevado ao longo do tempo no grupo com ND em relação aos controles (p < 0,001). No entanto, a administração do antagonista do MIF (p425) reduziu significativamente a excreção urinária de proteína de 6h (p < 0,001) no grupo com ND em comparação ao grupo com ND não tratado (Tabela 2). Os resultados indicaram um efeito de melhoria do p425 no grupo com ND induzida por STZ, evidenciado por queda significativa (p < 0,001) na RPC na urina (Figura 2).
Houve correlação significativa entre excreção urinária de proteína e excreção urinária de glicosaminoglicanos (r = 0,89, p < 0,001) em todos os grupos do estudo (Figura 3).
As Figuras 4 e 5 mostram que a ND levou a lesão tubular caracterizada por acentuado descolamento tubular renal, necrose tubular e perda de borda em escova, além de aumento da área de superfície glomerular, expansão mesangial, espessamento da MBG e da cápsula de Bowman e aumento da deposição de proteínas da matriz na matriz mesangial. O "índice esclerótico", que reflete o acúmulo de matriz glomerular, aumentou nos ratos com ND não tratados em relação aos controles saudáveis (2,73 ± 0,17 vs. 0,2 ± 0,07, três semanas após o início da albuminúria, p < 0,001), mas sofreu queda significativa (1,17±0,16, p < 0,001) com tratamento com p425 (Figura 4). A deposição de colágeno no glomérulo foi acentuadamente reduzida no grupo com ND após tratamento com p425 (2,37 ± 0,11 vs. 0,57 ± 0,09, p < 0,001 Figura 5). Como mostrado nas Figuras 4 e 5, as alterações patológicas citadas acima foram significativamente reduzidas nos ratos com ND tratados com p425.
Figura 4 Fotomicrografias de tecidos renais corados pelo método PAS. ND: Nefropatia Diabética; p425: antagonista do MIF. As setas mostram o acúmulo de matriz mesangial em áreas livres de núcleos do mesângio nos glomérulos. O "índice esclerótico" se refere ao escore médio ± EP. Os escores refletem variações no grau e não na intensidade da coloração. * e † indicam diferença significativa em relação aos grupos de controle e ND, respectivamente (p<0,001). Ampliação: 400×.
Figura 5 Fotomicrografias de tecidos renais corados pelo método tricrômico de Masson. ND: Nefropatia Diabética; p425: antagonista do MIF. As setas mostram a deposição de colágeno. A "deposição glomerular de colágeno" se refere ao escore médio ± EP. * e † indicam diferença significativa em relação aos grupos de controle e ND, respectivamente (p<0,001). Ampliação: 400×.
Os resultados do presente estudo demonstraram que o antagonista do MIF (p425) reduziu a proteinúria e a excreção urinária de GAGs e preveniu o espessamento da membrana basal glomerular e o acúmulo de MEC nos ratos com ND induzida por STZ. Houve um aumento significativo na excreção urinária de proteínas durante o estudo de seis semanas. Foi observado espessamento da MBG. Alterações nas cadeias de GAGs de heparan sulfato não foram investigadas no presente estudo. Contudo, a perda de proteoglicanos de heparan sulfato na MBG foi associada a proteinúria em doenças glomerulares, incluindo ND.32 Os resultados do presente estudo confirmaram que a excreção urinária de GAGs estava elevada nos ratos diabéticos não tratados, como descrito anteriormente por Reddi.33,34 Uma queda significativa na excreção urinária de GAGs foi detectada nos ratos com ND tratados com p425 em relação aos ratos com ND não tratados. A excreção urinária de GAGs foi significativamente correlacionada com a excreção de proteínas em todos os grupos do estudo. Tal fato pode indicar que a perda aumentada de proteoglicanos em rins diabéticos é revertida pelo tratamento com antagonista do MIF (p425). Este é o primeiro relato de tal efeito.
Os resultados dos parâmetros bioquímicos foram corroborados pelos achados da microscopia óptica. Tais achados sugerem que a inibição do MIF pode ser benéfica para ND e que este efeito pode ser atribuído ao seu papel na modulação da ativação dos macrófagos e da membrana basal glomerular. Nosso interesse reside no MIF enquanto potencial alvo terapêutico para ND, não só por estar elevado em pacientes e modelos animais com ND,26,27 mas também por conta de seu papel fundamental na cascata inflamatória e na polarização dos macrófagos. O MIF é a primeira molécula a chegar ao local da inflamação e provavelmente determina o grau de inflamação celular.24
Embora as alterações na atividade da heparanase não tenham sido examinadas no presente estudo, atividade da heparanase foi relatada em macrófagos, plaquetas, neutrófilos, monócitos, células de Langerhans e várias outras células.18-23 Supõe-se que a heparanase secretada ou associada à membrana seja responsável pela degradação da MEC. A atividade da heparanase, uma endoglicosidase que cliva especificamente as cadeias laterais da HS de HSPG, foi observada em pacientes diabéticos tipo 1 e tipo 2 com proteinúria.12,13 Portanto, a perda de HS na membrana basal glomerular resulta em diminuição da barreira de carga aniônica, o que possivelmente a configura como uma das principais causas de proteinúria na ND.
A ND é caracterizada por fibrose progressiva como via final, eventualmente afetando todas as subestruturas do rim. Estudos recentes descrevem infiltração intersticial de macrófagos ligada à produção de citocinas responsáveis por lesão histológica e proliferação e ativação de fibroblastos.35,36 Alguns estudos demonstraram que macrófagos M1 classicamente ativados induzem permeabilidade podocitária.37 O presente estudo forneceu evidências de que a inibição do MIF foi funcionalmente significativa, o que possivelmente levou à redução da ativação de macrófagos no rim diabético e à queda da proteinúria, acúmulo de MEC e deposição de colágeno em glomérulos in vivo. Esses efeitos podem ser atribuídos ao efeito inibitório do MIF sobre a ativação de macrófagos no rim diabético. Portanto, a inibição do MIF pode representar uma estratégia terapêutica potencial para ND.
Em conclusão, o tratamento com antagonista do MIF (p425) reduz a excreção urinária de proteína e GAGs, evita o espessamento da MBG e a deposição de colágeno, e provavelmente produz efeito protetor contra a perda de conteúdo aniônico na MBG de ratos com ND. A preservação de GAGs e das cargas aniônicas da MBG parece ser um dos mecanismos pelos quais o p425 reduz a proteinúria em ratos diabéticos.